[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: درباره نشريه :: آخرين شماره :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
:: دوره 29، شماره 5 - ( 8-1400 ) ::
جلد 29 شماره 5 صفحات 55-44 برگشت به فهرست نسخه ها
فعالیت باکتریولیتیک باکتریوفاژ جدید PϕBw-Ec01 از خانوادۀ Cystoviridae علیه سویۀ بالینی Escherichia coli مقاوم به آنتی‌بیوتیک موجود در زخم سوختگی
لادن رحیم زاده ترابی1 ، منیر دودی* 2، نفیسه السادات نقوی1، رامش منجمی3
1- گروه میکروبیولوژی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد فلاورجان، فلاورجان، اصفهان، ایران
2- گروه میکروبیولوژی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد فلاورجان، فلاورجان، اصفهان، ایران ، monirdoudi@yahoo.com
3- گروه بیولوژی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد فلاورجان، فلاورجان، اصفهان، ایران
چکیده:   (106 مشاهده)
مقدمه: پیدایش مقاومت Escherichia coli به آنتی‌بیوتیک‌های معمول در بیماران دارای زخم سوختگی، به یک چالش جدی و بحث‌برانگیز در بیمارستان‌های سوانح و سوختگی ایران تبدیل‌شده است. ظهور هرچه بیشتر مقاومت دارویی از سوی پاتوژن‌های عفونی، زمینه‌ساز مطالعۀ بیشتر ماهیت فاژهاست و مقولۀ فاژتراپی به‌طور چشمگیری می‌تواند با این بحران پیش رو مقابله کند؛ بنابراین، هدف از این تحقیق در فاز اول، جداسازی و شناسایی بیوشیمیایی و مولکولی Escherichia coli  مقاوم به آنتی‌بیوتیک و ایجادکنندۀ عفونت‌های زخم‌های سوختگی است و در فاز دوم، جداسازی فاژهای اختصاصی باکتری‌های این زخم‌ها و سپس ارزیابی ویژگی‌های مورفولوژیکی فاژ و بررسی محدودۀ میزبان بود.
مواد و روش ها: در این بررسی، جمعاً 50 ایزولۀ باکتریایی از بیمارستان‌های تخصصی سوانح و سوختگی شهرهای اصفهان، یزد، تهران و رشت جداسازی شدند که در میان آن‌ها، شناسایی دقیق و بررسی پروفایل مقاومت آنتی‌بیوتیکی توسط روش انتشار دیسک در آگار صورت گرفت. تکثیر ژن کدکنندۀ 16S rRNA با استفاده از تکنیک  PCRانجام گردید؛ سپس محصول PCR برای تعیین توالی به آزمایشگاه ژن‌آزما ارسال شد. به‌منظور جداسازی فاژهای احتمالی، برداشت نمونه از فاضلاب خام (ورودی تصفیه‌خانۀ شمال) اصفهان در ایران صورت گرفت. بررسی مورفولوژی فاژ توسط TEM، شمارش پلاک‌های فاژی و ارزیابی محدودۀ میزبان برای این باکتریوفاژ انجام و گزارش شد.
یافته‌ها: توالی 16S rRNA باکتری در NCBI با [MW844043] Accession Number قرار گرفت. فاژ اختصاصیPϕBw-Ec01 به‌طور فراوانی قادر به عفونی کردن باکتری‌های  Escherichia coliمقاوم بود. میکروسکوپ الکترونیTEM  نشان داد که فاژ ایزوله شدۀ ویروس بدون دم و dsRNA و متعلق به خانوادۀ Cystoviridae با پروتوتایپ 6ɸ است. فاژ لیتیک  PϕBw-Ec01 میزان اثربخشی بالایی را در جلوگیری از رشد باکتری Escherichia coli سویۀ ADB_66-1 در این مطالعه داشت.
بحث و نتیجه‌گیری: نتایج این گزارش مبین آن بود که Escherichia coli جداشدۀ از زخم سوختگی بیماران بستری، مقاومت نسبتاً بالایی به گروه عمده‌ای از آنتی‌بیوتیک‌های معمول داشته است. فاژ مطالعه‌شده در این تحقیق می‌تواند یک انتخاب خوب و گزینۀ مناسب برای کنترل و مهار این‌گونه پاتوژن‌های مقاوم در زخم سوختگی بیماران بستری باشد. امید است که با تحقیقات گسترده‌تر دربارۀ هویت و مطالعۀ میزان اثربخشی سایر باکتریوفاژها، لیز باکتریایی حاصل از تأثیر فاژها را بررسی کرد تا بار میکروبی ناشی از پاتوژن‌های مقاوم و عفونت‌زا را کاهش داد و بتوان به‌عنوان یک عامل کمک درمانی مؤثر در برابر عفونت‌های زخم سوختگی از آن‌ها استفاده نمود.
واژه‌های کلیدی: فاژ تراپی|مقاومت آنتی بیوتیکی|باکتریوفاژ|اشرشیاکلای|16S rRNA|سوختگی|عفونت زخم|16S rRNA ،
متن کامل [PDF 1403 kb]   (35 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: میکروب شناسی پزشکی
دریافت: 1400/2/28 | پذیرش: 1400/4/5 | انتشار: 1400/8/17
فهرست منابع
1. Nikaido H. Multidrug resistance in bacteria. Annu Rev Biochem 2009; 78:119-46. doi.10.1146/
2. annurev.biochem.78.082907.145923
3. Li XZ, Plesiat P, Nikaido H. The challenge of efflux mediated antibiotic resistance in Gram negative bacteria. Clin Microbiol Rev 2015; 28:337-418. doi. 10.1128/CMR.00117-14
4. Richardson LA. Understanding and overcoming antibiotic resistance. PLos Biol2017; 15: 2003775. doi.10.1371/journal.pbio.2003775.
5. Summer GJ, Puntillo KA, Miaskowski C, Green PG, Levine JD. Burn injury pain the continuing challenge. J Pai 2007; 8:533-48. doi.10.1016/
6. j.jpain.2007.02.426.
7. Rosenkranz KM, Sheridan R. Management of the burned trauma patient balancing conflicting priorities. Burns 2002; 28:665-9. doi.10.1016/
8. s0305-4179(02)00109-2.
9. Hawkins A, Maclennan PA, Mcgwin JRG, Cross JM, Rue LW. The impact of combined trauma and burns on patient mortality. J Trauma 2005; 58:284-8. doi.10.1097/01.ta.0000130610.19361. bd.
10. Bowler PG, Duerden BI, Armstrong DG. Wound microbiology and associated approaches to wound management. Clin Microbiol Rev 2001; 14:244-69. doi.10.1128/CMR.14.2.244-269.2001.
11. Loccarrillo C, Wu S, Beck JP. Phage therapy of wounds and related purulent infections. 1th ed. Cambridge USA CAB Int Publication. 2012; P.185-202.
12. Centers for disease control and prevention. Antibiotic antimicrobial resistance. 2 th ed. CDC Gov Drug Publication. 2017; P.1-100.
13. Church D, Elsayed S, Reid O, Winston B, Lind‌say R. Burn wound infections. Clin Microbiol Rev 2006; 19:403-34. doi.10.1128/CMR.19.2.403-434.2006.
14. Mayhall CG. The epidemiology of burn wound infections then and now. Clin Infect Dis 2003; 37543-50. doi.10.1086/376993.
15. Rafla K, Tredget EE. Infection control in the burn unit. Burns 2011; 37:5-15. doi. 10.1016/j.burns.
17. Azzopardi EA, Azzopardi E, Camilleri L, Villapalos J, Boyce DE, Dziewulski P, et al. Gram negative wound infection in hospitalised adult burn patients systematic review and metanalysis. Plos One 2014; 9:95042. doi.10.1371/journal.pone.0095042.
18. Norbury W, Herndon DN, Tanksley J, Jeschke MG, Finnerty CC. Infection in Burns. Surg Inf 2016; 17:250-5. doi.10.1089/sur.2013.134.
19. Chan Benjamin K, Abedonstephen T, Loccarrillo C. Phage cocktails and the future of phage therapy. Future Microbiol2013; 8:769-83. doi.10.2217/
20. fmb.13.47.
21. Doss J, Culbertson K, Hahn D, Camacho J, Barekzi N. A review of phage therapy against bacterial pathogens of aquatic and terrestrial organisms. Viruses 2017; 9:50. doi.10.3390/v9030050
22. Rahimzadehtorabi L, Doudi M, Noori A. [Antibacterial effects of gold nanoparticles on multi sdrug resistant Klebsiella pneumoniae and Escherichia coli and Its effect on the liver of balb/c Mice]. JSSU2016; 23:1001-17. (Persian)
23. Goli HR, Nahaei MR, Ahangarzadehrezaee M. Emergence of colistin resistant Pseudomonas aeruginosa at Tabriz hospitals Iran. Iran J Microbiol 2016; 8:62-9.
24. Weisburg WG, Barns SM, Pelletier DA et al. 16S ribosomal DNA amplification for phylogenetic study. J Bacteriol 1991; 173:697-703. doi.10.1128/
25. jb.173.2.697-703.1991.
26. Naghavi NS, Golgoljam M, Akbari, M. Effect of three sewage isolated bacteriophages on the multi drug resistant pathogenic bacteria. J Biol Sci 2013. doi.10.3923/jbs.2013.422.426
27. Ghasemi SM, Bouzari M, Emtiazi G. Preliminary characterization of Lactococcus garvieae bacteriophage isolated from wastewater as a potential agent for biological control of lactococcosis in aquaculture. Aquacult Int 2014; 22:1469-80. doi.10.1007/s00705-014-2142-z.
28. Rahimzadehtorabi L, Doudi M, Naghavi N, Monajemi R. Isolation characterization, and effectiveness of bacteriophage against XDR Acinetobacter baumannii isolated from nosocomial burn wound infection. Iranian J Bas Med Sci 2021; 24: 1254-63. doi.10.22038/ijbms.2021.57772.12850.
29. Mendes JJ, Leandro C, Cortereal S. Wound healing potential of topical bacteriophage therapy on diabetic cutaneous wounds. Wound Rep Reg 2013; 21:595-603. doi.10.1111/wrr.12056.
30. Rahimzadeh Torabi L, Doudi M, Naghavi N, Monajemi R. Bacteriophages pen-cl and pen-ho can eliminate MDR Enterobacter cloacae and Enterobacter hormaechei isolated from burn wound infections without toxicity for human skin cells. FEMS Microbiol Let 2021; 368: 143. doi.10.1093/femsle/fnab143.
31. Rahimzadehtorabi L, Naghavi NS, Doudi M, Monajemi R. Efficacious antibacterial potency of novel bacteriophages against ESBL producing Klebsiella pneumoniae isolated from burn wound infections. Iran J Microbiol 2021; 13:678-690. doi.10.18502/ijm. v13i5.7435.
32. Shokri D, Soleimani DA, Moayednia R, Mobasherizadeh S, Shirsalimian M, Enayatollahi S, et al. Isolation identification and evaluation of two lytic Bacteriophages against clinical antibiotic-resistant strains of Pseudomonas aeruginosa from waste water and hospital sewage of Isfahan city. Sci J Ilam Uni Med Scie 2015; 23:164-1172.
33. Zare L, Shenagari M, Khan Mirzaei MA, Mojtahedi A. Isolation of lytic phages against pathogenic E. coli isolated from diabtic ulcers. Iran J Med Microbiol 2017; 11:34-41.
34. Rahmani R, Zarrini G, Sheikhzadeh F, Aghamohammadzadeh N. Effective phages as green antimicrobial agents against antibiotic resistant hospital Escherichia coli Jundishapur J Microbiol 2015; 8:59808. doi.10.5812/jjm.17744. doi.10.5812/jjm.17744.
35. Hosainzadegan H, Mohammadi M, Pajohy N, Ebrahimzade F. Study of lytic phage and alkaline phosphatase on treatment of burn infections caused by Escherichia coli in MouseIran J Med Microbiol 2008; 2:37-43.
36. Servick K. Beleaguered phage therapy trial presses on. Science 2016; 352:1506. doi.10.1126/science.
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA

Ethics code: IR.IAU.FALA.REC.1400.017


XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Rahimzadeh Torabi L, Doudi M, Naghavi N S, Monajemi R. Bacteriolytic Activity of Novel Bacteriophage PϕBw Ec01 from Cystoviridae Family against the Clinical Strain of Antibiotic Resistant Escherichia Coli in Burn Wounds. sjimu. 2021; 29 (5) :44-55
URL: http://sjimu.medilam.ac.ir/article-1-7099-fa.html

رحیم زاده ترابی لادن، دودی منیر، نقوی نفیسه السادات، منجمی رامش. فعالیت باکتریولیتیک باکتریوفاژ جدید PϕBw-Ec01 از خانوادۀ Cystoviridae علیه سویۀ بالینی Escherichia coli مقاوم به آنتی‌بیوتیک موجود در زخم سوختگی. مجله علمی دانشگاه علوم پزشکی ایلام. 1400; 29 (5) :55-44

URL: http://sjimu.medilam.ac.ir/article-1-7099-fa.html



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
دوره 29، شماره 5 - ( 8-1400 ) برگشت به فهرست نسخه ها
مجله دانشگاه علوم پزشکی ایلام Journal of Ilam University of Medical Sciences
Persian site map - English site map - Created in 0.15 seconds with 31 queries by YEKTAWEB 4372