[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: درباره نشريه :: صفحه اصلي :: آخرين شماره :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
بخش‌های اصلی
صفحه اصلی::
اطلاعات نشریه::
آرشیو مجله و مقالات::
نمایه ها::
برای نویسندگان::
هزینه چاپ::
برای داوران::
ثبت نام و اشتراک::
تماس با ما::
تسهیلات پایگاه::
سیاست های نشریه ::
بیانیه اخلاقی::
ثبت شکایت::
::
Citation Indices from GS

Citation Indices from GS

AllSince 2020
Citations69613511
h-index2819
i10-index20982
..
جستجو در پایگاه

جستجوی پیشرفته
..
دریافت اطلاعات پایگاه
نشانی پست الکترونیک خود را برای دریافت اطلاعات و اخبار پایگاه، در کادر زیر وارد کنید.
..
ثبت شده در

AWT IMAGE

AWT IMAGE

..
:: دوره 32، شماره 6 - ( 11-1403 ) ::
جلد 32 شماره 6 صفحات 45-27 برگشت به فهرست نسخه ها
تأثیر آنتول روی تشکیل بیوفیلم، میزان ارگوسترول و آب‌گریزی سطح سلولی کاندیدا گلابراتای جداشده از دستگاه ادراری
حمید حاجی غلامرضا1 ، عقیل شریف زاده1 ، حجت اله شکری* 2، جلال حسن3
1- گروه میکروبیولوژی و ایمونولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تهران، تهران، ایران
2- گروه پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تخصصی فناوری‌های نوین آمل، آمل، ایران ، hshokri@ausmt.ac.ir
3- گروه علوم زیستی مقایسه‌ای، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تهران، تهران، ایران
چکیده:   (74 مشاهده)
مقدمه: در حال حاضر، مقاومت به داروهای ضدقارچی شیمیایی مشکل بهداشتی بزرگی است؛ بنابراین، شناسایی مولکول‌های جدید ضدقارچی مانند فرآورده‌های طبیعی برای ایجاد راهبردهای جدید درمانی به‌منظور پیشگیری و حذف کاندیدیازیس ضروری است. اهداف این کار شامل مطالعۀ تأثیر آنتول روی رشد، آب‌گریزی سطح سلولی، میزان ارگوسترول و تشکیل بیوفیلم کاندیدا گلابراتای جداشده از دستگاه ادراری است.
مواد و روش­ها: روش انتشار دیسک (حساسیت به داروهای ضدقارچی شیمیایی)، روش میکرودایلوشن براث (حساسیت به آنتول)، سنجش کاهش MTT (تشکیل بیوفیلم)، تکنیک HPLC (میزان ارگوسترول) و اتصال به n- هگزادکان (آب‌گریزی سطح سلولی) برای تعیین تأثیر آنتول برابر جدایه‌‌های کاندیدا گلابراتا به‌کار گرفته شدند. تجزیه‌وتحلیل آماری داده‌ها با نرم‌افزار GraphPad Prism vol.9.0.0.121 و آزمون  One-Way ANOVA و آزمون‌های دوتایی Tukey Test / Post-hoc ANOVA در سطح معنا‌دار 05/0 انجام گرفت.
یافته­ های پژوهش: دامنۀ حداقل غلظت مهارکنندگی کاندیدا گلابراتا حدود 1250-5/312 میکروگرم در میلی‌لیتر برای آنتول بود (75/343±75/843 میکروگرم در میلی‌لیتر). درصدهای آبگریزی سطح سلولی به‌طور معناداری در گروه‌های تیمارشده با غلظت‌های MIC/2 (37/6±73/24 درصد) و MIC/4 (61/6±01/29 درصد) آنتول بودند؛ همچنین تغییرات درصدی در میزان ارگوسترول غشایی حدود 35/23، 46/46 و 92/73 درصد در غلظت‌های 125/0، 25/0 و 5/0 میکروگرم در میلی‌لیتر آنتول در مقایسه با گروه شاهد غیرتیمار بود.
بحث و نتیجه‌گیری: این نتایج اثربخشی آنتول برابر سلول‌های پلانکتونیک و بیوفیلمی جدایه‌‌های کاندیدا گلابراتا و تداخل با میزان ارگوسترول، آبگریزی سطح سلولی و تشکیل بیوفیلم را نشان دادند که بیان‌کنندۀ توانایی بالقوۀ این ترکیب به‌عنوان یک ضدقارچ طبیعی است.

 
واژه‌های کلیدی: کاندیدا گلابراتا، آنتول، بیوفیلم، ارگوسترول، آبگریزی سطح سلولی
متن کامل [PDF 1403 kb]   (40 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: بیماریهای عفونی
دریافت: 1402/2/5 | پذیرش: 1402/9/4 | انتشار: 1403/11/15
فهرست منابع
1. de Oliveira Santos GC, Vasconcelos CC, Lopes AJO, de Sousa Cartágenes MdS, Filho AKDB, do Nascimento FRF, et al. Candida infections and therapeutic strategies: mechanisms of action for traditional and alternative agents. Front Microbiol 2018; 3:1351. doi: 10.3389/fmicb.2018.01351.
2. Mohamed AA, Lu XL, Mounmin FA. Diagnosis and treatment of esophageal candidiasis: current updates. Can J Gastroenterol Hepatol 2019; 1:3585136. doi: 10.1155/2019/3585136.
3. García-Agudo L, Rodríguez-Iglesias M. Nosocomial candiduria in the elderly: microbiological diagnosis. Mycopathologia 2017; 1:1-6. doi: 10.1007/s11046-017-0232-7.
4. Pemán J, Ruiz-Gaitán A. Candidemia from urinary tract source: the challenge of candiduria. Hosp Pract 2018; 46:243-5. doi: 10.1080/21548331.2018.1538623.
5. de Paula SB, Bartelli TF, Di Raimo V, Santos JP, Morey AT, Bosini MA, et al. Effect of eugenol on cell surface hydrophobicity, adhesion, and biofilm of Candida tropicalis and Candida dubliniensis isolated from oral cavity of HIV-infected patients. Evidence-Based Alt Med 2014; 2014:505204. doi:10.1155/2014/505204.
6. Li WS, Chen YC, Kuo SF, Chen FJ, Lee CH. The impact of biofilm formation on the persistence of candidemia. Front Microbiol 2018; 4:1196. doi: 10.3389/fmicb.2018.01196.
7. Taff HT, Mitchell KF, Edward JA, Andes DR. Mechanisms of Candida biofilm drug resistance. Future Microbiol 2013; 8:1325-37. doi: 10.2217/fmb.13.101.
8. Ellepola AN, Samaranayake LP. Investigative methods for studying the adhesion and cell surface hydrophobicity of andida species: an overview. Microb Ecol Health Dis 2001; 13:46-54. doi: 10.1080/089106001750071708.
9. Clotz SA, Drutz DJ, Zajic JE. Factors governing adherence of Candida species to plastic surfaces. Infect Immun 1985; 50:97-101. doi: 10.1128/iai.50.1.97-101.1985.
10. Panagoda GJ, Ellepola ANB, Samaranayake LP. Adhesion of Candida parapsilosis to epithelial and acrylic surfaces corre lates with cell surface hydrophobicity. Mycoses 2001; 44:29-35. doi: 10.1046/j.1439-0507.2001.00611. x.
11. Pinheiro PF, Menini LAP, Bernardes PC, Saraiva SRH, Carneiro JWM, Costa AV, et al. Semisynthetic phenol derivatives obtained from natural phenols: antimicrobial activity and molecular properties. J Agri Food Chem 2018; 66:323-30. doi: 10.1021/acs.jafc.7b04418.
12. Khan MS, Ahmad I. Antibiofilm activity of certain phytocompounds and their synergy with fluconazole against Candida albicans biofilms. J Antimicrob Chemother 2012; 67:618-21. doi: 10.1093/jac/dkr512.
13. Kubo I, Fujita KI, Nihei KI. Antimicrobial activity of anethole and related compounds from aniseed. J Sci Food Agri 2008; 88:242-7. doi: 10.1002/jsfa.3079.
14. Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI), Reference Method for Disk Diffusion Antifungal Susceptibility Testing of Yeasts, Approved Guidelinesecond Edition. CLSI document M44-A2, Clinical and Laboratory StandardsInstitute, Wayne PA, 2009.
15. Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI), Reference Method for Broth Dilution Antifungal Susceptibility Testing of Yeasts, Approved Guidelinesecond Edition. CLSI document M27-A3, Clinical and Laboratory Standards Institute, Wayne PA, 2008.
16. Pierce CG, Uppuluri P, Tristan AR, Wormley FL, Mowat E, Ramage G, et al. A simple and reproducible 96-well plate-based method for the formation of fungal biofilms and its application to antifungal susceptibility testing. Nat Protoc 2008; 3:1494-500. doi: 10.1038/nport.2008.141.
17. Álvarez M, Rodríguez A, Bermúdez E, Roncero E, Andrade MJ. Development of a methodology for estimating the ergosterol in meat product-borne toxigenic moulds to evaluate antifungal agents. Foods 2021; 10:438. doi: 10.3390/foods10020438.
18. Anil S, Ellepola ANB, Samaranayake LP. The impact of chlorhexidine gluconate on the relative cell surface hydrophobicity of oral Candida albicans. Oral Dis 2001; 7:119-22.
19. Kucharíková S, Neirinck B, Sharma N, Vleugels J, Lagrou K, Van Dijck P. In vivo Candida glabrata biofilm development on foreign bodies in a rat subcutaneous model. J Antimicrob Chemother 2015; 70:846-56. doi: 10.1093/jac/dku447.
20. Hitkova HY, Georgieva DS, Hristova PM, Marinova-Bulgaranova TV, Kirilov Borisov B, Georgiev Popov V. Antifungal susceptibility of non-albicans Candida species in a tertiary care hospital, Bulgaria. Jundishapur J Microbiol 2020;13: e101767. doi: 10.5812/jjm.101767.
21. Razzaghi-Abyaneh M, Sadeghi G, Zeinali E, Alirezaee M, Shams-Ghahfarokhi M, Amani A, et al. Species distribution and antifungal susceptibility of Candida spp. isolated from superficial candidiasis in outpatients in Iran. J Mycol Med 2014;24: e43-e50. doi: 10.1016/j.mycmed.2014.01.004.
22. Jain N, Kohli R, Cook E, Gialanella P, Chang T, Fries B. Biofilm formation by and antifungal susceptibility of Candida isolates from urine. Appl Environ Microbiol 2007; 73:1697-703. doi: 10.1128/AEM.02439-06.
23. d'Enfert C, Janbon G. Biofilm formation in Candida glabrata: What have we learnt from functional genomics approaches? FEMS yeast Res 2016; 16:111. doi: 10.1093/femsyr/fov111.
24. Fujita KI, Fujita T, Kubo I. Anethole, a potential antimicrobial synergist, converts a fungistatic dodecanol to a fungicidal agent. Phytother Res 2007; 21:47-51. doi: 10.1002/ptr.2016.
25. Mohammadzadeh F, Yahyaraeiyat R, Sharifzadeh A. Evaluation of the effect of anethole against dual biofilms of Candida albicans and Staphylococcus aureus in vitro. Mycoses 2020.
26. Vieira Priscila RN, de Morais, Selene M, Bezerra, Francisco HQ, Augusto TFP; Írvila R, et al. Chemical composition and antifungal activity of essential oils from Ocimum species. Industr Crops Prod 2014; 55:267-71. doi: 10.1016/j.indcrop.2014.02.032.
27. Dąbrowska M, Zielińska‐Bliźniewska H, Kwiatkowski P, Łopusiewicz Ł, Pruss A, Kostek M, et al. Inhibitory effect of eugenol and trans‐anethole alone and in combination with antifungal medicines on Candida albicans clinical isolates. Chem Biodivers 2021;18: e2000843. doi: 10.1002/cbdv.202000843.
28. Borghi E, Sciota R, Biassoni C, Cirasola D, Cappelletti L, Vizzini L, et al. Cell surface hydrophobicity: a predictor of biofilm production in Candida isolates? J Med Microbiol 2011; 60:689-90. doi: 10.1099/jmm.0.026898-0.
29. Silva-Dias A, Miranda IM, Branco J, Monteiro-Soares M, Pina-Vaz C, Rodrigues AG. Adhesion, biofilm formation, cell surface hydrophobicity, and antifungal planktonic susceptibility: relationship among Candida spp. Front Microbiol 2015;12:205. doi: 10.3389/fmicb.2015.00205.
30. de Paula SB, Bartelli TF, Di Raimo V, Santos JP, Morey AT, Bosini MA, et al. Effect of eugenol on cell surface hydrophobicity, adhesion, and biofilm of Candida tropicalis and Candida dubliniensis isolated from oral cavity of HIV-infected patients. Evid Based Complement Alternat Med 2014; 2014:505204. doi: 10.1155/2014/505204.
31. Khan MS, Ahmad I, Cameotra SS, Botha F. Sub-MICs of Carum copticum and Thymus vulgaris influence virulence factors and biofilm formation in Candida spp. BMC Complement Alternat Med 2014;14:1-14. doi: 10.1186/1472-6882-14-337.
32. Raut JS, Shinde RB, Chauhan NM, Karuppayil SM. Terpenoids of plant origin inhibit morphogenesis, adhesion, and biofilm formation by Candida albicans. Biofouling 2013; 29:87-96. doi: 10.1080/08927014.2012.749398.
33. Samber N, Khan A, Varma A, Manzoor N. Synergistic anti-candidal activity and mode of action of Mentha piperita essential oil and its major components. Pharma Biol 2015; 53:1496-504. doi: 10.3109/13880209.2014.989623.
34. Alizadeh F, Khodavandi A, Esfandyari S, Nouripour-Sisakht S. Analysis of ergosterol and gene expression profiles of sterol∆ 5, 6-desaturase (ERG3) and lanosterol 14α-demethylase (ERG11) in Candida albicans treated with carvacrol. J Herbmed Pharmacol 2018; 7:79-87. doi: 10.15171/jhp.2018.14.
35. Lone SA, Khan S, Ahmad A. Inhibition of ergosterol synthesis in Candida albicans by novel eugenol tosylate congeners targeting sterol 14α-demethylase (CYP51) enzyme. Arch Microbiol 2020; 202:711-26. doi: 10.1007/s00203-019-01781-2.
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA

Ethics code: 300511/6/4


XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Haji Gholamreza H, Sharifzadeh A, Shokri H, Hasan J. Efficacy of Anethole on Biofilm Formation, Ergosterol Content, and Cell Surface Hydrophobicity of Candida Glabrata Isolated from Urinary System. J. Ilam Uni. Med. Sci. 2025; 32 (6) :27-45
URL: http://sjimu.medilam.ac.ir/article-1-7955-fa.html

حاجی غلامرضا حمید، شریف زاده عقیل، شکری حجت اله، حسن جلال. تأثیر آنتول روی تشکیل بیوفیلم، میزان ارگوسترول و آب‌گریزی سطح سلولی کاندیدا گلابراتای جداشده از دستگاه ادراری. مجله دانشگاه علوم پزشکی ایلام. 1403; 32 (6) :27-45

URL: http://sjimu.medilam.ac.ir/article-1-7955-fa.html



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
دوره 32، شماره 6 - ( 11-1403 ) برگشت به فهرست نسخه ها
مجله دانشگاه علوم پزشکی ایلام Journal of Ilam University of Medical Sciences
Persian site map - English site map - Created in 0.15 seconds with 41 queries by YEKTAWEB 4680