[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: درباره نشريه :: صفحه اصلي :: آخرين شماره :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
بخش‌های اصلی
صفحه اصلی::
اطلاعات نشریه::
آرشیو مجله و مقالات::
نمایه ها::
برای نویسندگان::
هزینه چاپ::
برای داوران::
ثبت نام و اشتراک::
تماس با ما::
تسهیلات پایگاه::
سیاست های نشریه ::
بیانیه اخلاقی::
ثبت شکایت::
::
Citation Indices from GS

Citation Indices from GS

AllSince 2019
Citations63313635
h-index2719
i10-index18779
..
جستجو در پایگاه

جستجوی پیشرفته
..
دریافت اطلاعات پایگاه
نشانی پست الکترونیک خود را برای دریافت اطلاعات و اخبار پایگاه، در کادر زیر وارد کنید.
..
ثبت شده در

AWT IMAGE

AWT IMAGE

..
:: دوره 31، شماره 4 - ( 7-1402 ) ::
جلد 31 شماره 4 صفحات 67-55 برگشت به فهرست نسخه ها
بررسی تأثیر قهوۀ سبز و اسید کلروژنیک بر سازوکار ذخایر گلیکوژن عضلانی موش‌های C57BL/6 پیش‌دیابتی
سید غلامحسین رحیمی* 1، سید محمد مرندی2 ، میلاد عبداللهی2 ، سمانه شیرخانی3 ، محمدحسین نصراصفهانی4
1- گروه تربیت‌بدنی، دانشکدۀ ادبیات و علوم انسانی، دانشگاه ملایر، ملایر، ایران ، qolale@yahoo.com
2- گروه تربیت‌بدنی، دانشکدۀ علوم ورزشی، دانشگاه اصفهان، اصفهان، ایران
3- گروه علوم ورزشی، دانشگاه اصفهان تربیت‌بدنی، دانشکدۀ اصفهان، ایران
4- گروه زیست‌شناسی، پژوهشکدۀ زیست‌فناوری پژوهشگاه رویان، اصفهان، ایران
چکیده:   (662 مشاهده)
مقدمه: شیوع روزافزون چاقی میلیون‌‌ها نفر در جهان را تحت تأثیر قرار داده است که بیماری‌‌های مختلفی همچون پیش‌‌دیابت، دیابت، بیماری‌‌های قلبی عروقی، سرطان و اختلالات عضلانی را به همراه خواهد داشت. یکی از مداخلات درمانی در پیشگیری از دیابت استفاده از مکمل‌های گیاهی مانند قهوۀ سبز و ترکیبات فنولی آن ازجمله اسیدکلروژنیک، با توجه به خواص آنتی‌اکسیدانی، ضدالتهابی و حساس به انسولین است؛ ازاین‌رو، مطالعۀ حاضر با هدف بررسی تأثیر قهوۀ سبز و اسیدکلروژنیک بر ذخایر گلیکوژنی در عضلات موش‌های‌ پیش‌‌دیابتی انجام شد.
مواد و روش­ها: تعداد ۲۰ سر موش نر C57BL/6 به‌طور تصادفی به دو گروه تقسیم گردیدند: موش‌های با رژیم غذایی طبیعی (Normal Diet، ۵ سر) و موش‌‌های با رژیم غذایی پرچرب (High – Fat Diet، ۱۵ سر) که به مدت ۱۲ هفته تغذیه شدند. پس از تشخیص القای پیش‌دیابت توسط آزمون‌های Fasting blood suger (FBS) و Glucose tolerance test (GTT)، این گروه به سه زیرگروه تقسیم گردیدند: موش‌های پیش‌‌دیابت (Pre-Diabetes، 5 سر)، پیش‌‌دیابت همراه مصرف قهوۀ سبز (Pre-Diabetes -Green Cofee، 5 سر) و پیش‌‌دیابت همراه مصرف اسید‌‌کلروژنیک (Pre-Diabetes -Cholorogenic Acid، 5 سر) که به مدت ۱۰ هفته تیمار شدند. در انتها موش‌ها کشته شدند و سطح نسبی بیان ژن‌های دخیل در ذخایر گلیکوژن عضلۀ دوقلو شامل PI3K،AKT، GSK3، GYS1 و همچنین ژن LRRC8A از طریق تکنیک Real-Time PCR اندازه‌گیری گردید. داده‌ها با استفاده از آزمون تحلیل واریانس یک-راهه توسط نرم‌افزار GraphPad Prism 8.4.3 تحلیل شد.
یافته­ های پژوهش: نتایج افزایش معناداری در سطح گلوکز خون در گروه HFD (mg/dL 4/5±9/ 129) نسبت به ND (mg/dL ±3 3/95) و همچنین کاهش معناداری در گروه‌‌ PD-GC (mg/dL 16/8±5/ 103) و PD-CA (mg/dL 8± 99) نسبت به گروه PD (mg/dL 4/9±5/ 129) نشان داد (0.001>P). با استفاده از فن رنگ‌آمیزی Periodic acid - Schiff (‌‌PAS)، کاهش چشمگیری در سطح ذخایر گلیکوژن در موش‌های گروه PD، نسبت به گروه ND مشاهده گردید، درحالی‌که در گروه‌‌های تیمار، افزایش معنی‌‌دار در تجمع گلیکوژن عضله، نسبت به گروه PD دیده شد (0.001>P). سطح ‌‌بیان ژن‌های PI3K، AKT، LRRC8A و GYS1 کاهش و GSK3 افزایش معناداری در گروه ‌‌PD در مقایسه با گروه ND نشان ‌داد (0.001>P) که نشان‌دهندۀ اختلال در مسیر پیام‌رسانی ذخایر گلیکوژن در گروه ‌‌PD است؛ اما در گروه‌‌های تحت تیمار، افزایش معنی‌داری از سطح بیان ژن‌‌های PI3K، AKT، LRRC8A و GYS1، در مقایسه با گروه‌‌PD مشاهده شد (0.001>P).
بحث و نتیجه‌گیری: با توجه به عوارض ناشی از بیماری پیش‌دیابت، علاوه بر تشخیص زودهنگام پیش‌دیابت، به نظر می‌رسد به‌منظور کنترل وزن و افزایش حساسیت انسولینی، مصرف قهوۀ سبز و اسیدکلروژنیک می‌‌تواند شرایط پیش‌‌دیابتی ایجادشده بر مسیر پیام‌رسانی سنتز گلیکوژن در بافت عضلۀ ‌‌موش‌‌های پیش‌دیابتی را بهبود بخشد.
 
واژه‌های کلیدی: رژیم پرچرب، قهوۀ سبز، اسید کلروژنیک، گلیکوژن عضلانی، پیش‌‌دیابت
متن کامل [PDF 771 kb]   (220 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: تغذیه
دریافت: 1401/12/26 | پذیرش: 1402/4/10 | انتشار: 1402/7/15
فهرست منابع
1. Melo LC, Dativo-Medeiros J, Menezes-Silva CE, Barbosa FT, de Sousa-Rodrigues CF, Rabelo LA. Physical Exercise on Inflammatory Markers in Type 2 Diabetes Patients: A Systematic Review of Randomized Controlled Trials. Oxid Med Cell Longev 2017;2017:8523728. doi: 10.1155/2017/8523728.
2. Krug EG. Trends in diabetes: sounding the alarm. Lancet 2016;387:1485-86. doi: 10.1016/S0140-6736(16)30163-5.
3. Khan RMM, Chua ZJY, Tan JC, Yang Y, Liao Z, Zhao Y. From Pre-Diabetes to Diabetes: Diagnosis, Treatments and Translational Research. Medicina (Kaunas) 2019;55:546. doi: 10.3390/medicina55090546.
4. Cherrington AD, Edgerton D, Sindelar DK. The direct and indirect effects of insulin on hepatic glucose production in vivo. Diabetologi 1998;41:987-96. doi: 10.1007/s001250051021.
5. Schmitz O, Rungby J, Edge L, Juhl CB. On high-frequency insulin oscillations. Ageing Res Rev 2008;7:301-5. doi: 10.1016/j.arr.2008.04.002.
6. Mao CS, Berman N, Roberts K, Ipp E. Glucose entrainment of high-frequency plasma insulin oscillations in control and type 2 diabetic subjects. Diabetes 1999;48:714-21. doi: 10.2337/diabetes.48.4.714.
7. Huang X, Liu G, Guo J, Su Z. The PI3K/AKT pathway in obesity and type 2 diabetes. Int J Biol Sci 2018;14:1483-96. doi: 10.7150/ijbs.27173.
8. Højlund K. Metabolism and insulin signaling in common metabolic disorders and inherited insulin resistance. Dan Med J 2014;61:B4890.
9. Orho-Melander M, Almgren P, Kanninen T, Forsblom C, Groop LC. A paired-sibling analysis of the XbaI polymorphism in the muscle glycogen synthase gene. Diabetologia 1999;42:1138-45. doi: 10.1007/s001250051282.
10. Kumar L, Chou J, Yee CS, Borzutzky A, Vollmann EH, von Andrian UH, et al. Leucine-rich repeat containing 8A (LRRC8A) is essential for T lymphocyte development and function. J Exp Med 2014;211:929-42. doi: 10.1084/jem.20131379.
11. Kumar A, Xie L, Ta CM, Hinton AO, Gunasekar SK, Minerath RA, et al. SWELL1 regulates skeletal muscle cell size, intracellular signaling, adiposity and glucose metabolism. Elife 2020;9:e58941. doi: 10.7554/eLife.58941.
12. Gunasekar SK, Xie L, Kumar A, Hong J, Chheda PR, Kang C, et al. Small molecule SWELL1 complex induction improves glycemic control and nonalcoholic fatty liver disease in murine Type 2 diabetes. Nat Commun 2022;13:784. doi: 10.1038/s41467-022-28435-0.
13. Morvaridi M, Rayyani E, Jaafari M, Khiabani A, Rahimlou M. The effect of green coffee extract supplementation on cardio metabolic risk factors: a systematic review and meta-analysis of randomized controlled trials. J Diabetes Metab Disord 2020;19:645-60. doi: 10.1007/s40200-020-00536-x.
14. Abdel Mohsen D, Akabawy A, Abdemoneim A, Amin HK. The possible effects of green coffee bean extract on progression of experimental diabetes in different organs; A review article. J Adv Pharm Res 2021;5:297-304. doi: 10.21608/APRH.2021.77827.1133.
15. Vats A. Pharmacological properties of Green coffee: a review. J Adv Pharm Technol Res 2022;11:2970-6.
16. Rojas-González A, Figueroa-Hernández CY, González-Rios O, Suárez-Quiroz ML, González-Amaro RM, Hernández-Estrada ZJ, et al. Coffee Chlorogenic Acids Incorporation for Bioactivity Enhancement of Foods: A Review. Molecules 2022;27:3400. doi: 10.3390/molecules27113400.
17. Soviguidi DRJ, Pan R, Liu Y,Rao L, Zhang W, Yang X. Chlorogenic acid metabolism: the evolution and roles in plant response to abiotic stress. Phyton 2022;91:239. doi: 10.32604/phyton.2022.018284.
18. Kang C-W, Park M, Lee H-J. Mulberry (Morus alba L.) leaf extract and 1-Deoxynojirimycin improve skeletal muscle insulin resistance via the activation of IRS-1/PI3K/Akt pathway in db/db mice. Life 2022;12:1630. doi: 10.3390/life12101630.
19. Abdollahi M, Marandi SM, Ghaedi K, Safaeinejad Z, Kazeminasab F, Shirkhani S, et al. Insulin-Related Liver Pathways and the Therapeutic Effects of Aerobic Training, Green Coffee, and Chlorogenic Acid Supplementation in Prediabetic Mice. Oxid Med Cell Longev 2022;2022:5318245. doi: 10.1155/2022/5318245.
20. Choi BK, Park SB, Lee DR, Lee HJ, Jin YY, Yang SH, Suh JW. Green coffee bean extract improves obesity by decreasing body fat in high-fat diet-induced obese mice. Asian Pac J Trop Med 2016;9:635-43. doi: 0.1016/j.apjtm.2016.05.017.
21. Li X, Wang G, Xu Y, Wang Y, Hao R, Ma X. Xiao Ke Qing improves glycometabolism and ameliorates insulin resistance by regulating the PI3K/Akt pathway in KKAy mice. Front Med 2018;12:688-96. doi: 10.1007/s11684-018-0662-8.
22. Grundy SM. Prediabetes, metabolic syndrome, and cardiovascular risk. J Am Coll Cardiol 2012;59:635-43. doi: 10.1016/j.jacc.2011.08.080.
23. Preguiça I, Alves A, Nunes S, Fernandes R, Gomes P, Viana SD, et al. Diet-induced rodent models of obesity-related metabolic disorders-A guide to a translational perspective. Obes Rev 2020;21:e13081. doi: 10.1111/obr.13081.
24. Brouns F. Overweight and diabetes prevention: is a low-carbohydrate-high-fat diet recommendable?. Eur J Nutr 2018;57:1301-12. doi: 10.1007/s00394-018-1636-y.
25. Jensen J, Lai Y-C. Regulation of muscle glycogen synthase phosphorylation and kinetic properties by insulin, exercise, adrenaline and role in insulin resistance. Arch Physiol Biochem 2009;115:13-21. doi: 10.1080/13813450902778171.
26. Damsbo P, Vaag A, Hother-Nielsen O, Beck-Nielsen H. Reduced glycogen synthase activity in skeletal muscle from obese patients with and without type 2 (non-insulin-dependent) diabetes mellitus. Diabetologia 1991;34:239-45. doi: 10.1007/BF00405082.
27. Johnson A, Webster J, Sum C-F, Heseltine L, Argyraki M, Cooper B, et al. The impact of metformin therapy on hepatic glucose production and skeletal muscle glycogen synthase activity in overweight type II diabetic patients. Metabolism 1993;42:1217-22. doi: 10.1016/0026-0495(93)90284-u.
28. Shulman GI, Rothman DL, Jue T, Stein P, DeFronzo RA, Shulman RG. Quantitation of muscle glycogen synthesis in normal subjects and subjects with non-insulin-dependent diabetes by 13C nuclear magnetic resonance spectroscopy. N Engl J Med 1990;322:223-8. doi: 10.1056/NEJM199001253220403.
29. Kim Y-B, Nikoulina SE, Ciaraldi TP, Henry RR, Kahn BB. Normal insulin-dependent activation of Akt/protein kinase B, with diminished activation of phosphoinositide 3-kinase, in muscle in type 2 diabetes. J Clin Invest1999;104:733-41. doi: 10.1172/JCI6928.
30. Morino K, Petersen KF, Dufour S, Befroy D, Frattini J, Shatzkes N, et al. Reduced mitochondrial density and increased IRS-1 serine phosphorylation in muscle of insulin-resistant offspring of type 2 diabetic parents. J Clin Invest 2005;115:3587-93. doi: 10.1172/JCI25151.
31. Kumar A, Xie L, Ta CM, Hinton AO, Gunasekar SK, Minerath RA, et al. SWELL1 regulates skeletal muscle cell size, intracellular signaling, adiposity and glucose metabolism. Elife 2020;9:e58941. doi: 10.7554/eLife.58941.
32. Huang L, Fang Y, Tang L. Comparisons of different exercise interventions on glycemic control and insulin resistance in prediabetes: a network meta-analysis. BMC Endocr Disord 2021;21:181. doi: 10.1186/s12902-021-00846-y.
33. Al-Brakati A, Albarakati AJA, Daabo H, Baty RS, Salem FEH, Habotta OA, et al. Neuromodulatory effects of green coffee bean extract against brain damage in male albino rats with experimentally induced diabetes. Metab Brain Dis 2020;35:1175-87. doi: 10.1007/s11011-020-00583-6.
34. Pimpley V, Patil S, Srinivasan K, Desai N, Murthy PS. The chemistry of chlorogenic acid from green coffee and its role in attenuation of obesity and diabetes. Prep Biochem Biotechnol 2020;50:969-978. doi: 10.1080/10826068.2020.1786699.
35. Beam JR, Gibson AL, Kerksick CM, Conn CA, White AC, Mermier CM. Effect of post-exercise caffeine and green coffee bean extract consumption on blood glucose and insulin concentrations. Nutrition 2015;31:292-7. doi: 10.1016/j.nut.2014.07.012.
36. Peng BJ, Qi Z, Zhong YL, Xu SH, Zheng W. Chlorogenic acid maintains glucose homeostasis through modulating the expression of SGLT-1, GLUT-2, and PLG in different intestinal segments of Sprague-Dawley rats fed a high-fat diet. Biomed Environ Sci 2015;28:894-903. doi: 10.3967/bes2015.123.
37. Chen L, Teng H, Cao H. Chlorogenic acid and caffeic acid from Sonchus oleraceus Linn synergistically attenuate insulin resistance and modulate glucose uptake in HepG2 cells. Food Chem Toxicol 2019;127:182-87. doi: 10.1016/j.fct.2019.03.038.
38. Ramos LV, da Costa THM, Arruda SF. The effect of coffee consumption on glucose homeostasis and redox-inflammatory responses in high-fat diet-induced obese rats. J Nutr Biochem 2022;100:108881. doi: 10.1016/j.jnutbio.2021.108881.
39. Zamani‐Garmsiri F, Ghasempour G, Aliabadi M, Hashemnia SMR, Emamgholipour S, Meshkani R. Combination of metformin and chlorogenic acid attenuates hepatic steatosis and inflammation in high‐fat diet fed mice. IUBMB life 2021;73:252-63. doi: 10.1002/iub.2424.
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA

Ethics code: IR.UI.1401019


XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Rahimi S G, Marandi S M, Abdollahi M, Shirkhani S, Nasr-Esfahani M H. Investigating the effect of green coffee and chlorogenic acid on the mechanism of muscle glycogen content in prediabetic C57BL/6 mice. J. Ilam Uni. Med. Sci. 2023; 31 (4) :55-67
URL: http://sjimu.medilam.ac.ir/article-1-7925-fa.html

رحیمی سید غلامحسین، مرندی سید محمد، عبداللهی میلاد، شیرخانی سمانه، نصراصفهانی محمدحسین. بررسی تأثیر قهوۀ سبز و اسید کلروژنیک بر سازوکار ذخایر گلیکوژن عضلانی موش‌های C57BL/6 پیش‌دیابتی. مجله دانشگاه علوم پزشکی ایلام. 1402; 31 (4) :55-67

URL: http://sjimu.medilam.ac.ir/article-1-7925-fa.html



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
دوره 31، شماره 4 - ( 7-1402 ) برگشت به فهرست نسخه ها
مجله دانشگاه علوم پزشکی ایلام Journal of Ilam University of Medical Sciences
Persian site map - English site map - Created in 0.17 seconds with 40 queries by YEKTAWEB 4646