[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: درباره نشريه :: صفحه اصلي :: آخرين شماره :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
بخش‌های اصلی
صفحه اصلی::
اطلاعات نشریه::
آرشیو مجله و مقالات::
نمایه ها::
برای نویسندگان::
هزینه چاپ::
برای داوران::
ثبت نام و اشتراک::
تماس با ما::
تسهیلات پایگاه::
سیاست های نشریه ::
بیانیه اخلاقی::
ثبت شکایت::
::
جستجو در پایگاه

جستجوی پیشرفته
..
دریافت اطلاعات پایگاه
نشانی پست الکترونیک خود را برای دریافت اطلاعات و اخبار پایگاه، در کادر زیر وارد کنید.
..
ثبت شده در

AWT IMAGE

AWT IMAGE

..
:: دوره 34، شماره 3 - ( 5-1405 ) ::
جلد 34 شماره 3 صفحات 106-95 برگشت به فهرست نسخه ها
نقش ترکیب محیط کشت در تنظیم بیوفیلم‌‌سازی و رشد سلول‌های کاندیدا آلبیکنس
الهام ابوعلی گله داری1 ، سمیه محمدی2 ، مریم عرفانی نژاد3 ، فاطمه پورمطهری4 ، مهناز فتاحی نیا*5
1- گروه انگل‌شناسی و قارچ‌شناسی، دانشکده پیراپزشکی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران
2- کمیته تحقیقات دانشجویی، دانشگاه علوم پزشکی ایلام، ایلام، ایران
3- گروه علوم پایه پزشکی، دانشکده علوم پزشکی شوشتر، شوشتر، ایران
4- گروه پزشکی اجتماعی و بهداشت، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی دزفول، دزفول، ایران
5- گروه قارچ شناسی پزشکی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی جندی شاپور اهواز، اهواز، ایران ، fatahinia@yahoo.com
چکیده:   (119 مشاهده)
مقدمه: عفونت‌های قارچی مهاجم به‌ویژه ناشی از کاندیدا آلبیکنس، یکی از چالش‌های مهم سلامت جهانی هستند. این قارچ فرصت‌طلب در شرایط ضعف ایمنی یا مصرف داروهای گسترده می‌تواند به عامل بیماری‌زا تبدیل شود و عفونت‌های موضعی و سیستمیک ایجاد کند و همچنین توانایی کاندیدا آلبیکنس در تشکیل بیوفیلم، مقاومت دارویی و عود مکرر عفونت‌ها را افزایش می‌دهد.
مواد و روش­ها: در مطالعۀ تجربی حاضر، چسبندگی و تشکیل بیوفیلم ایزوله‌های کاندیدا آلبیکنس در دو محیط کشت سابرو دکستروز براث (SDB) و RPMI-1640 مقایسه گردید. سوسپانسیون مخمری با غلظت مشخص در میکروپلیت ۹۶ خانۀ ته‌صاف قرار داده شد و پس از ۴۸ ساعت انکوباسیون، بیوفیلم‌‌‌ها با روش رنگ‌آمیزی کریستال ویوله و اندازه‌گیری جذب نوری ارزیابی گردید. تحلیل داده‌ها با آزمون من-ویتنی انجام شد.
یافته­ های پژوهش: میزان تشکیل بیوفیلم در محیط RPMI-1640 به‌طور معناداری بالاتر از محیط SDB بود، درحالی‌که رشد پلانکتونیک در SDB بیشتر مشاهده شد.
بحث و نتیجه‌گیری: نتایج نشان داد، محیط RPMI-1640 با ترکیبات مغذی پیچیده و غلظت پایین گلوکز، شرایط بهینه‌ای برای شکل‌گیری بیوفیلم فراهم می‌کند، درحالی‌که محیط غنی از گلوکز رشد پلانکتونیک را تقویت می‌سازد. این یافته‌ها اهمیت انتخاب محیط کشت مناسب برای مطالعات بیوفیلم و بهبود راهکارهای درمانی را تأکید می‌نماید.
واژه‌های کلیدی: کاندیدا آلبیکنس، بیوفیلم، محیط کشت، مقاومت دارویی، RPMI-1640
متن کامل [PDF 766 kb]   (46 دریافت)    
یادداشت سردبیر: پژوهشي | موضوع مقاله: قارچ شناسي
دریافت: 1404/8/23 | پذیرش: 1405/3/9 | انتشار: 1405/5/5
فهرست منابع
1. Gaffar NR, Valand N, Girija UV. Candidiasis: Insights into Virulence Factors, Complement Evasion and Antifungal Drug Resistance. Microorganisms. 2025; 13:272. doi: 10.3390/microorganisms13020272.
2. Tsui C, Kong EF, Jabra-Rizk MA. Pathogenesis of Candida albicans biofilm. Pathog Dis. 2016;74: ftw018. doi: 10.1093/femspd/ftw018.
3. Parambath S, Dao A, Kim HY, Zawahir S, Alastruey Izquierdo A, Tacconelli E, et al. Candida albicans—A systematic review to inform the World Health Organization Fungal Priority Pathogens List. Med Mycol. 2024;62:myae045. doi: 10.1093/mmy/myae074.
4. Talapko J, Juzbašić M, Matijević T, Pustijanac E, Bekić S, Kotris I, et al. Candida albicans—the virulence factors and clinical manifestations of infection. J Fungi. 2021;7:79. doi: 10.3390/jof7020079.
5. Abdullah AT, Al-Hawash AB, Dhari FM. Evaluation of The Effect of Aqueous Garlic Extract Against Candida Albicans and Candida Krusei Isolated From The Vagina. IJHSM. 2025;2:10.21070/ijhsm. doi: 10.21070/ijhsm.v2i1.80.
6. Pristov K, Ghannoum M. Resistance of Candida to azoles and echinocandins worldwide. Clin Microbiol Infect. 2019;25:792-8. doi: 10.1016/j.cmi.2019.03.028.
7. Erfaninejad M, Zarei Mahmoudabadi A, Maraghi E, Hashemzadeh M, Fatahinia M. Epidemiology, prevalence, and associated factors of oral candidiasis in HIV patients from southwest Iran in post-highly active antiretroviral therapy era. Front Microbiol. 2022;13:983348. doi: 10.3389/fmicb.2022.983348.
8. Maryoush SS, Ajah HA, Abdulrazaq RA. Detection of Some Virulence Factors from Candida spp. Isolated from Vaginal and Oral Candidiasis in Iraqi Patients. Clin Lab. 2025;71 doi: 10.7754/Clin.Lab.2024.240304.
9. Sachivkina N, Podoprigora I, Bokov D. Morphological characteristics of Candida albicans, Candida krusei, Candida guilliermondii, and Candida glabrata biofilms, and response to farnesol. Vet World. 2021;14:1608. doi: 10.14202/vetworld.2021.1608-1614.
10. Rafiq NB. Candidiasis. StatPearls . StatPearls Publishing; 2023.
11. Kumar A, Yadav B, Roy A, Mishra P, Poluri KM, Gupta P. Biochemical Insights into synergistic Candida Biofilm disintegrating ability of p-cymene inclusion complex and miconazole. Eur J Pharmacol. 2025:177365. doi: 10.1016/j.ejphar.2025.177365.
12. Gulati M, Nobile CJ. Candida albicans biofilms: development, regulation, and molecular mechanisms. Microbes Infect. 2016;18:310-21. doi: 10.1016/j.micinf.2016.01.002.
13. Xia C, Liu R, Zhang S, Shen J, Wang Z. Fluconazole-induced changes in azole resistance and biofilm production in Candida glabrata in vitro. Diagn Microbiol Infect Dis. 2025;111:116683. doi: 10.1016/j.diagmicrobio.2025.116683.
14. Zarnowski R, Horton MV, Johnson CJ, Vang PC, Uram J, Fernando LDP, et al. Dual function of Candida auris mannosyltransferase, MTN5, in biofilm community protection from antifungal therapy and the host. mBio. 2025:e00346-25. doi: 10.1128/mbio.00346-25.
15. Ponde NO, Lortal L, Ramage G, Naglik JR, Richardson JP. Candida albicans biofilms and polymicrobial interactions. Crit Rev Microbiol. 2021;47:91-111. doi: 10.1080/1040841X.2020.1843400.
16. Høiby N, Bjarnsholt T, Moser C, Bassi G, Coenye T, Donelli G, et al. ESCMID guideline for the diagnosis and treatment of biofilm infections 2014. Clin Microbiol Infect. 2015;21:S1-S25. doi: 10.1016/j.cmi.2014.10.024.
17. Dhasarathan P, AlSalhi MS, Devanesan S, Subbiah J, Ranjitsingh A, Binsalah M, et al. Drug resistance in Candida albicans isolates and related changes in the structural domain of Mdr1 protein. J Infect Public Health. 2021;14:1848-53. doi: 10.1016/j.jiph.2021.11.002.
18. Sardi J, Scorzoni L, Bernardi T, Fusco-Almeida A, Mendes Giannini MJS. Candida species: current epidemiology, pathogenicity, biofilm formation, natural antifungal products and new therapeutic options. J Med Microbiol. 2013;62:10-24. doi: 10.1099/jmm.0.045054-0.
19. Ding X, Liu Z, Su J, Yan D. Human serum inhibits adhesion and biofilm formation in Candida albicans. BMC Microbiol. 2014;14:1-9. doi: 10.1186/1471-2180-14-80.
20. Weerasekera MM, Wijesinghe GK, Jayarathna TA, Gunasekara CP, Fernando N, Kottegoda N, et al. Culture media profoundly affect Candida albicans and Candida tropicalis growth, adhesion and biofilm development. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2016;111:697-702. doi: 10.1590/0074-02760160294.
21. Costa PdS, Prado A, Bagon NP, Negri M, Svidzinski TIE. Mixed fungal biofilms: From mycobiota to devices, a new challenge on clinical practice. Microorganisms. 2022;10:1721. doi: 10.3390/microorganisms10091721.
22. Pereira R, dos Santos Fontenelle RO, De Brito E, De Morais S. Biofilm of Candida albicans: formation, regulation and resistance. J Appl Microbiol. 2021;131:11-22. doi: 10.1111/jam.14949.
23. Ramage G, Vande Walle K, Wickes BL, López-Ribot JL. Standardized method for in vitro antifungal susceptibility testing of Candida albicans biofilms. Antimicrob Agents Chemother. 2001;45:2475-9. doi: 10.1128/AAC.45.9.2475-2479.2001.
24. Weerasekera M. Culture media profoundly affect Candida albicans and Candida tropicalis growth, adhesion and biofilm development. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2016;111:697-702. doi: 10.1590/0074-02760160294.
25. Abdulghani M, Zore G. Optimization of in vitro Biofilm Growth of Candida albicans. Indian J Microbiol. 2025;65:1361-5. doi: 10.1007/s12088-024-01220-x.
26. Arzmi MH, Alnuaimi AD, Dashper S, Cirillo N, Reynolds EC, McCullough M. Polymicrobial biofilm formation by Candida albicans, Actinomyces naeslundii, and Streptococcus mutans is Candida albicans strain and medium dependent. Med Mycol. 2016;54:856-64. doi: 10.1093/mmy/myw042.
27. Arévalo-Jaimes BV, Admella J, Blanco-Cabra N, Torrents E. Culture media influences Candida parapsilosis growth, susceptibility, and virulence. Front Cell Infect Microbiol. 2023; 13:1323619. doi: 10.3389/fcimb.2023.1323619.
28. Tan Y, Leonhard M, Ma S, Schneider-Stickler B. Influence of culture conditions for clinically isolated non-albicans Candida biofilm formation. J Microbiol Methods. 2016;130:123-8. doi: 10.1016/j.mimet.2016.09.011.
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA

Ethics code: IR.AJUMS.REC.1404.309


XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Aboualigalehdari E, Mohamadi S, Erfaninejad M, Pourmotahari F, Fatahinia M. The Role of Culture Medium Composition in Regulating Biofilm Formation and Growth of Candida Albicans Cells. J. Ilam Uni. Med. Sci. 2026; 34 (3) :95-106
URL: http://sjimu.medilam.ac.ir/article-1-8830-fa.html

ابوعلی گله داری الهام، محمدی سمیه، عرفانی نژاد مریم، پورمطهری فاطمه، فتاحی نیا مهناز. نقش ترکیب محیط کشت در تنظیم بیوفیلم‌‌سازی و رشد سلول‌های کاندیدا آلبیکنس. مجله دانشگاه علوم پزشکی ایلام. 1405; 34 (3) :95-106

URL: http://sjimu.medilam.ac.ir/article-1-8830-fa.html



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
دوره 34، شماره 3 - ( 5-1405 ) برگشت به فهرست نسخه ها
مجله دانشگاه علوم پزشکی ایلام Journal of Ilam University of Medical Sciences
Persian site map - English site map - Created in 0.17 seconds with 40 queries by YEKTAWEB 4766