[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: درباره نشريه :: صفحه اصلي :: آخرين شماره :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
:: دوره 29، شماره 6 - ( 10-1400 ) ::
جلد 29 شماره 6 صفحات 27-20 برگشت به فهرست نسخه ها
بررسی آثار ضدسرطانی سم مار کبرا (Naja naja oxiana) در مقایسه با داروی دوکسوروبیسین در ردۀ سلولی سرطانی HeLa و نرمال فیبروبلاست HFF
فاطمه جوانی جونی1 ، جابر ظفری2، الهه شمس3، پرویز عبدالمالکی4، علی اصغر رستگاری* 5
1- گروه مهندسی پزشکی، دانشکدۀ بهداشت، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد پزشکی تهران، تهران، ایران
2- مرکز تحقیقات کاربرد لیزر در علوم پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شهید بهشتی، تهران، ایران
3- دانشکده علوم پزشکی و خدمات بهداشتی درمانی بهبهان، بهبهان، ایران
4- گروه بیوفیزیک، دانشکدۀ علوم زیستی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران، ایران
5- گروه بیوشیمی سلولی و مولکولی، دانشکدۀ علوم زیستی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد فلاورجان، اصفهان، ایران ، aarastegari@gmail.com
چکیده:   (851 مشاهده)
مقدمه: سرطان عامل اصلی مرگ در بیشتر کشورها است. از روش‌های متعددی برای درمان سرطان استفاده می‌شود. دوکسوروبیسین از مهم‌ترین داروهای شیمی‌درمانی به‌شمار می‌رود که آثار جانبی متعددی مانند ناباروری، هایپراوریسمی، نوروپاتی، کاردیومیوپاتی و... به همراه دارد. هدف از مطالعۀ حاضر، بررسی آثار ضدسرطانی سم مار ناجا ناجا اکسیانا (Naja naja oxiana) در مقایسه با داروی دوکسوروبیسین در ردۀ سلولی سرطان Hela (Human cervical cancer) و HFF(Human foreskin fibroblast) است.
مواد و روش ها: رده‌های سلولی سرطان Hela و طبیعی فیبروبلاست در معرض غلظت‌های مختلف (1، 10، 50، 100، 500 میکروگرم بر میلی‌لیتر) سم مار و داروی دوکسوروبیسین قرار گرفتند. به‌منظور بررسی مقدار IC50 (Inhibitory Concentration) برای سم و دارو، از روش MTT استفاده شد. درنهایت، با استفاده از نرم‌افزار SPSS vol.19 نتایج تحلیل گردیدند.
یافته‌ها: نتایج نشان می‌دهد که با افزایش غلظت و زمان تیمار با سم مار و دوکسوروبیسین، درصد سلول‌های زندۀ Hela و فیبروبلاست کاهش می‌یابد. بیشترین کاهش درصد سلول‌های زنده در ردۀ سلولی سرطان Hela تیمارشده با غلظت 500 میکروگرم بر میلی‌لیتر سم مار برای مدت‌زمان 48 ساعت مشاهده شد.
بحث و نتیجه‌گیری: سم مار در مقایسه با دوکسوروبیسین می‌تواند اثر مهارکنندۀ چشمگیری بر درصد سلول‌های زندۀ سرطانی Hela داشته باشد.
واژه‌های کلیدی: سلول‌های سرطانی دهانۀ رحم انسانی، دوکسوروبیسین، سم مار
متن کامل [PDF 528 kb]   (294 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: سم شناسی
دریافت: 1400/3/13 | پذیرش: 1400/9/8 | انتشار: 1400/11/15
فهرست منابع
1. Siegel RL, Miller KD, Jemal A. Cancer statistics. Cancer J Clin2019;69:30-4. doi. 10.3322/caac.21551
2. Afsar B, Afsar R, Ertuglu L, Kuwabara M, Ortiz A, Covic A, et al. Renin angiotensin system and cancer: epidemiology cell signaling genetics and epigenetics. Clini Trans Oncol 2021;23:682-96. doi. 10.1007/s12094-020-02488-3.
3. Mattiuzzi C, Lippi G. Current cancer epidemiology. J Epidemiol Glob Health2019;9:217-22. doi.10.2991/jegh.k.191008.001.
4. Kumar P, Singh G, Rai V. Evaluation of COMT gene rs4680 polymorphism as a risk factor for endometrial cancer. Indian J Clin Biochem 2020;35:63-71. doi.10.1007/s12291-018-0799-x.
5. Nevala WK, Buhrow SA, Knauer DJ, Reid JM, Atanasova EA, Markovic SN Antibody targeted chemotherapy for the treatment of melanoma. Can Res 2016;76:3954-64. doi.10.1158/0008-5472.CAN-15-3131.
6. Savard J, Ivers H, Savard MH, Morin CM. Cancer treatments and their side effects are associated with aggravation of insomnia: results of a longitudinal study. Cancer 2015;121:1703-11. doi.10.1002/cncr.29244.
7. Miller KD, Siegel RL, Lin CC, Mariotto AB, Kramer JL, Rowland JH, et al. Cancer treatment and survivorship statistics 2016. Cancer J Clin 2016;66:271-89. doi.10.3322/caac.21349.
8. Fanipakdel A, Elyasi S, Mahdikooshiar M, Jannatiyazdanabad M, Marouzi A, Asgarian M. Identification and analysis of adverse drug reactions associated with colorectal and gastric cancer chemotherapy in hospitalized patients. Med J Mashhad Uni Med Sci2018;61:921-30.
9. Wakharde AA, Awad AH, Bhagat A, Karuppayil SM. Synergistic activation of doxorubicin against cancer a review. Am J Clin Microbiol Antimic2018; 1: 1009.
10. Kelleni MT, Amin EF, Abdelrahman AM. Effect of metformin and sitagliptin on doxorubicin-induced cardiotoxicity in Rats impact of oxidative stress inflammation and apoptosis. J Toxicol 2015; 1-8. doi.10.1155/2015/424813
11. Rivankar S. An overview of doxorubicin formulations in cancer therapy. J Can Res Therap 2015; 10: 853. doi.10.4103/0973-1482.13926
12. Riyasat A, Zeenat M, Ghulam MD. New anticancer agents recent developments in tumor therapy. Ant Can Res2012; 32: 2999-3006.
13. Perezpeinado C, Defaus S, Andreu D. Hitchhiking with Nature snake venom peptides to fight cancer and superbugs. Toxins 2020;12:255. doi.10.3390/toxins12040255.
14. Urra FA, Arayamaturana R. Putting the brakes on tumorigenesis with snake venom toxins new molecular insights for cancer drug discovery. Sem Can Biol 2020; 2:221-5. doi.10.1016/j.semcancer.
16. Li L, Huang J, Lin Y. Snake venoms in cancer therapy: past, present and future. Toxins2018;10:346. doi.10.3390/toxins10090346.
17. Ebrahim K, Vatanpour H, Zare A, Shirazi FH, Nakhjavani M. Anticancer activity a of caspian cobra snake venom in human cancer cell lines via induction of apoptosis. Iranian J Pharm Res2016;15:101.
18. Strizhkov B, Blishchenko EY, Satpaev D, Karelin A. Both neurotoxin II from venom of Naja naja oxiana and its endogeneous analogue induce apoptosis in tumor cells. FEBS lett 1994;340:22-4. doi.10.1016/0014-5793(94)80165-7.
19. Shams E, Javanijouni F, Zafari J, Monajemi ., Abdolmaleki P. Effect of static magnetic field on the rate of proliferation and viability in hela cancer cells and normal fibroblasts. Horiz Med Sci 2017;23:7-12.
20. Zamanian M, Noormohammadi Z, Akbarzadeh T, Bineshian F, Sharifi Z. Comparison of MTT and trypan blue methods in determining the survival of vero cell line in HSV1 infection. Sci J Iran Blood Trans Org2021;18: 18-26.
21. Ulukaya E, Colakogullari M, Wood EJ. Interference by anti-cancer chemotherapeutic agents in the MTT-tumor chemosensitivity assay. Chemotherapy 2004; 50:43-50. doi.10.1159/000077285.
22. Miller KD, Nogueira L, Mariotto AB, Rowland JH, Yabroff KR, Alfano CM, et al. Cancer treatment and survivorship statistics, 2019. CA: a cancer j Clin 2019;69:363-85. doi.10.3322/caac.21565.
23. Esghaei M, Ghaffari H, Esboei BR, Tapeh ZE, Salim FB, Motevalian M. Evaluation of anticancer activity of Camellia silences in the Caco2 colorectal cancer cell line. Asian Pacif J Can Preve2018;19:1697. doi.10.22034/APJCP.2018.19.6.1697.
24. Thorn CF, Oshiro C, Marsh S, et al. Doxorubicin pathways pharmacodynamics and adverse effects. Pharm Genom2011; 21: 440-6. doi.10.1097/FPC. 0b013e32833ffb56.
25. Gottesman MM. Mechanisms of cancer drug resistance. Ann Rev Med2002;53:615-27. doi. 10.1146/annurev.med.53.082901.103929.
26. Chaisakul J, Hodgson WC, Kuruppu S, Prasongsook N. Effects of animal venoms and toxins on hallmarks of cancer. J Can 2016;7:1571. doi.10.7150/jca.15309. ecollection 2016.
27. Pal P, Roy S, Chattopadhyay S, Pal TK. Medicinal value of animal venom for treatment of cancer in humans a review. World Sci New2015;22:128-44.
28. Ajit S, Narang AS, Divyakant S, Desai DS. anticancer drug development. Pharm Pers Can Therap 2009, 49-92. doi.10.1007/978-1-4419-0131-6_2.
29. Chatterjee B. Animal venoms have potential to treat cancer. Cur Top Med Chem2018;18:2555-66. doi.10.2174/1568026619666181221120817 .
30. Yang SH, Chien CM, Lu MC, Lu YJ, Wu ZZ, Lin SR. Cardiotoxin III induces apoptosis in k562 cells through a mitochondrial mediated pathway. Clin Exp Pharmacol Physiol 2005;32:515-20. doi.10.1111/j.1440-1681.2005.04223.x.
31. Barati M, Davoudi DF.[Evaluation of toxicity and anticancer activity of isolated fraction from the venom of Iranian cobra snake on acute lymphoblastic leukemia cells]. J Cell Tis 2018;8:250-260. (Persian) doi. 10.29252/JCT.8.3.250.
32. Kollipara PS, Heewon CJH, Jung YY, Yoon HS, Park MH, Song MJ, et al. Enhanced anti-cancer effect of snake venom activated NK cells on lung cancer cells by inactivation of NF-κB. Biomole Therap 2014;22:106. doi.10.4062/biomolther.2013.103.
33. Zakraoui O, Marcinkiewicz C, Aloui Z, Othman H, Grepin R, Haoues M, et al. Lebein a snake venom disintegrin suppresses human colon cancer cells proliferation and tumor induced angiogenesis through cell cycle arrest, apoptosis induction and inhibition of VEGF expression. Mole Carcinogene 2017;56:18-35. doi.10.1002/mc.22470
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA

Ethics code: IR.IAU.FALA.REC.1398.301



XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Javani Jouni F, Zafari J, Shams E, Abdolmaleki P, Rastegari A A. Evaluation of Anti-Cancer Effects of Caspian Cobra (Naja naja oxiana) Snake Venom in Comparison with Doxorubicin in HeLa Cancer Cell Line and Normal HFF Fibroblast. Journal of Ilam University of Medical Sciences 2021; 29 (6) :20-27
URL: http://sjimu.medilam.ac.ir/article-1-7123-fa.html

جوانی جونی فاطمه، ظفری جابر، شمس الهه، عبدالمالکی پرویز، رستگاری علی اصغر. بررسی آثار ضدسرطانی سم مار کبرا (Naja naja oxiana) در مقایسه با داروی دوکسوروبیسین در ردۀ سلولی سرطانی HeLa و نرمال فیبروبلاست HFF. مجله دانشگاه علوم پزشکی ایلام 1400; 29 (6) :27-20

URL: http://sjimu.medilam.ac.ir/article-1-7123-fa.html



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
دوره 29، شماره 6 - ( 10-1400 ) برگشت به فهرست نسخه ها
مجله دانشگاه علوم پزشکی ایلام Journal of Ilam University of Medical Sciences
Persian site map - English site map - Created in 0.15 seconds with 31 queries by YEKTAWEB 4538