[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: درباره نشريه :: صفحه اصلي :: آخرين شماره :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
بخش‌های اصلی
صفحه اصلی::
اطلاعات نشریه::
آرشیو مجله و مقالات::
نمایه ها::
برای نویسندگان::
هزینه چاپ::
برای داوران::
ثبت نام و اشتراک::
تماس با ما::
تسهیلات پایگاه::
سیاست های نشریه ::
بیانیه اخلاقی::
ثبت شکایت::
::
جستجو در پایگاه

جستجوی پیشرفته
..
دریافت اطلاعات پایگاه
نشانی پست الکترونیک خود را برای دریافت اطلاعات و اخبار پایگاه، در کادر زیر وارد کنید.
..
ثبت شده در

AWT IMAGE

AWT IMAGE

..
:: دوره 34، شماره 4 - ( 7-1405 ) ::
جلد 34 شماره 4 صفحات 73-63 برگشت به فهرست نسخه ها
مقایسۀ 3 روش سلول‌زدایی تهیۀ داربست‌ طبیعی حالب انسان
فرامرز فاضلی1 ، محمود توکلی2 ، مهدی خیراندیش3 ، سمیرا شهرکی*4
1- گروه اورولوژی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی زاهدان، زاهدان، ایران
2- گروه اورولوژی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی مشهد، مشهد، ایران
3- گروه فیزیولوژی، دانشگاه علوم پزشکی زاهدان، زاهدان، ایران
4- گروه فیزیولوژی، دانشگاه علوم پزشکی زاهدان، زاهدان، ایران ، shahrakis@zaums.ac.ir
چکیده:   (255 مشاهده)
 مقدمه: در سال‌های اخیر، آسیب‌های پزشکی عمدتاً علت اصلی بازسازی حالب بوده‌اند. استفاده از درمان‌های جراحی کلاسیک ازجمله فلپ‌های مثانه، اتو پیوند کلیه و جایگزینی روده، نه‌تنها مشکلات بالینی فراوانی را ایجاد کرده‌اند، بلکه حتی نتوانسته‌اند بهبود عملکرد کاملی به همراه داشته باشند؛ بنابراین، مهندسی بافت با استفاده از کشت سلول‌ها روی داربست‌ها برای بازسازی حالب می‌تواند این عوارض را برطرف کند. هدف از این مطالعه، شناخت روش مناسب برای تهیۀ داربست  سلول‌زدایی‌شده حالب انسانی بود که به‌طور کامل سلول‌ها را از دست داده باشند.
مواد و روش­ها: در این مطالعه، 3 روش سلول‌‌زدایی حالب انسان که در شرایط استاندارد از بیمارستان امام علی زاهدان تحویل گرفته شد، با هم مقایسه گردید. در روش 1، از شویندۀ Triton X-100 1% درصد استفاده شد. در روش 2، از SDS1%   (سدیم دودسیل سولفات) استفاده گردید. در روش 3، از ترکیب SDS1%   و Triton X-100 1% استفاده شد. کارایی هر یک از روشهای سلول‌‌زدایی در روزهای 5 و 7، با استفاده از رنگ‌آمیزی فلورسنت DAPI (4', 6 diamidino-2-phenylindole) ) ارزیابی گردید.
یافته­ های پژوهش: باتوجه‌ به نتایج رنگ‌آمیزی DAPI ، مقایسه قطعات حالب انسانی سلول‌زدایی‌شده و بافت‌های حالب سلول‌زدایی‌ نشده، حذف هسته‌های سلولی و حفظ ماتریکس خارج سلولی در همۀ قطعات در هر 3 روش سلول زدایی را در همۀ زمان ها نشان داد. حذف اجزای سلولی در روش 3 روش های دیگر بیشتر بود و همچنین روز 7 در حذف هسته‌ها و مواد سلولی حالب انسانی، مؤثرتر از روز 5 بود.
بحث و نتیجه‌گیری: یافته‌‌های این مطالعه نشان می‌‌دهد که روش ترکیبی سلول‌زدایی (SDS1%+ Triton X-100)، در مقایسه با روش های دیگر، روش مؤثرتری برای تولید داربست‌های طبیعی حالب انسانی می باشد.

واژه‌های کلیدی: حالب انسانی، سلول‌زدایی، سدیم دودسیل سولفات، Triton X-100
متن کامل [PDF 756 kb]   (106 دریافت)    
یادداشت سردبیر: پژوهشي | موضوع مقاله: بیولوژی
دریافت: 1404/10/9 | پذیرش: 1405/4/1 | انتشار: 1405/7/5
فهرست منابع
1. Orabi H, Bouhout S, Morissette A, Rousseau A, Chabaud S, Bolduc S. Tissue engineering of urinary bladder and urethra: advances from bench to patients. ScientificWorldJournal. 2013;2013:154564. doi: 10.1155/2013/154564.
2. Lee SJ. Cytokine delivery and tissue engineering. Yonsei Med J . 2000;41(6):704-19. doi: 10.3349/ymj.2000.41.6.704.
3. Park KD, Kwon IK, Kim YH. Tissue engineering of urinary organs. Yonsei Med J. 2000; 41:780-8. doi: 10.3349/ymj.2000.41.6.780.
4. Orbay H, Tobita M, Mizuno H. Mesenchymal stem cells isolated from adipose and other tissues: basic biological properties and clinical applications. Stem Cells Int. 2012; 2012:461718. doi: 10.1155/2012/461718.
5. Davis N, Cunnane E, O'brien F, Mulvihill J, Walsh M. Tissue engineered extracellular matrices (ECMs) in urology: Evolution and future directions. Surgeon. 2018;16:55-65. doi: 10.1016/j.surge.2017.07.002.
6. Kloskowski T, Kowalczyk T, Nowacki M, Drewa T. Tissue engineering and ureter regeneration: is it possible? Int J Artifl Organs. 2013;36:392-405. doi: 10.5301/ijao.5000130.
7. Janke HP, de Jonge PK, Feitz WF, Oosterwijk E. Reconstruction strategies of the ureter and urinary diversion using tissue engineering approaches. Tissue Eng Part B Rev. 2019;25:237-48. doi: 10.1089/ten.TEB.2018.0345.
8. Lee GY, Kenny PA, Lee EH, Bissell MJ. Three-dimensional culture models of normal and malignant breast epithelial cells. Nat Methods. 2007;4:359-65. doi: 10.1038/nmeth1015.
9. Zhao P, Gu H, Mi H, Rao C, Fu J, Turng L-s. Fabrication of scaffolds in tissue engineering: A review. Front Mech Eng. 2018;13:107-19.
10. Atala A. Regenerative medicine strategies. J Pediatr Surg. 2012;47:17-28. doi: 10.1016/j.jpedsurg.2011.10.013.
11. Yang Q, Peng J, Guo Q, Huang J, Zhang L, Yao J, et al. A cartilage ECM-derived 3-D porous acellular matrix scaffold for in vivo cartilage tissue engineering with PKH26-labeled chondrogenic bone marrow-derived mesenchymal stem cells. Biomaterials. 2008;29:2378-87. doi: 10.1016/j.biomaterials.2008.01.037.
12. Xiao S-w, Wang P-c, Fu W-j, Wang Z-x, Li G, Zhang X. Novel perfusion-decellularized method to prepare decellularized ureters for ureteral tissue-engineered repair. J Biosci Bioeng. 2016;122:758-64. doi: 10.1016/j.jbiosc.2016.06.009.
13. Zhang Y, Yoo JJ, Atala A. Tissue engineering: bladder and urethra. Principles of Tissue Engineering. 2020:845-62. doi: 10.1016/B978-0-12-818422-6.00048-4
14. Badylak SF, Taylor D, Uygun K. Whole-organ tissue engineering: decellularization and recellularization of three-dimensional matrix scaffolds. Annu Rev Biomed Eng. 2011;13:27-53. doi:10.1146/annurev-bioeng-071910-124743.
15. Reing JE, Zhang L, Myers-Irvin J, Cordero KE, Freytes DO, Heber-Katz E, et al. Degradation products of extracellular matrix affect cell migration and proliferation. Tissue Eng Part A. 2009;15:605-14. doi: 10.1089/ten.tea.2007.0425.
16. Badylak SF, Freytes DO, Gilbert TW. Extracellular matrix as a biological scaffold material: structure and function. Acta Biomater. 2009;5:1-13. doi: 10.1016/j.actbio.2008.09.013.
17. Guruswamy Damodaran R, Vermette P. Tissue and organ decellularization in regenerative medicine. Biotechnol Prog. 2018;34:1494-505. doi: 10.1002/btpr.2699. Epub 2018 Oct 8.
18. Choi SH, Chun SY, Chae SY, Kim JR, Oh SH, Chung SK, et al. Development of a porcine renal extracellular matrix scaffold as a platform for kidney regeneration. J Biomed Mater Res A. 2015;103:1391-403. doi: 10.1002/jbm.a.35274.
19. Rafighdoust A, Shahri NM, Baharara J. Decellularized kidney in the presence of chondroitin sulfate as a natural 3D scaffold for stem cells. Iran J Basic Med Sci. 2015;18:788.
20. Narita Y, Kagami H, Matsunuma H, Murase Y, Ueda M, Ueda Y. Decellularized ureter for tissue-engineered small-caliber vascular graft. J Artif Organs. 2008;11:91-9. doi: 10.1007/s10047-008-0407-6.
21. Koch H, Hammer N, Ossmann S, Schierle K, Sack U, Hofmann J, et al. Tissue engineering of ureteral grafts: preparation of biocompatible crosslinked ureteral scaffolds of porcine origin. Front Bioeng Biotechnol. 2015;3:89. doi: 10.3389/fbioe.2015.00089.
22. Sabetkish S, Sabetkish N, Kajbafzadeh A-M. Regeneration of muscular wall of the bladder using a ureter matrix graft as a scaffold. Biotech Histochem. 2022;97:207-14. doi: 10.1080/10520295.2021.1931448.
23. Yang Y, Huang H, Li L, Yang Y. Multiplex Immunohistochemistry Staining for Paraffin-embedded lung cancer tissue. J Vis Exp. 2023;(201). doi: 10.3791/65850.
24. Kajbafzadeh A-M, Javan-Farazmand N, Monajemzadeh M, Baghayee A. Determining the optimal decellularization and sterilization protocol for preparing a tissue scaffold of a human-sized liver tissue. Tissue Eng Part C Methods. 2013;19:642-51. doi: 10.1089/ten.TEC.2012.0334. Epub 2013 Feb 14.
25. Kuniakova M, Klein M, Galfiova P, Csobonyeiova M, Feitscherova C, Polak S, et al. Decellularization of the human urethra for tissue engineering applications. Exp Biol Med (Maywood). 2023;248:1034-42. doi: 10.1177/15353702231162092.
26. Eberli D, Atala A. Tissue engineering using adult stem cells. Methods Enzymol. 2006;420:287-302. doi: 10.1016/S0076-6879(06)20013-2.
27. Gilbert TW, Sellaro TL, Badylak SF. Decellularization of tissues and organs. Biomaterials. 2006;27:3675-83. doi:10.1016/j.biomaterials.2006.02.014.
28. Simões IN, Vale P, Soker S, Atala A, Keller D, Noiva R, et al. Acellular urethra bioscaffold: decellularization of whole urethras for tissue engineering applications. Sci Rep. 2017;7:41934. doi: 10.1038/srep41934.
29. Gilbert TW, Sellaro TL, Badylak SF. Decellularization of tissues and organs. Biomaterials . 2006;27:3675-83. doi: 10.1016/j.biomaterials.2006.02.014.
30. Ross EA, Abrahamson DR, St. John P, Clapp WL, Williams MJ, Terada N, et al. Mouse stem cells seeded into decellularized rat kidney scaffolds endothelialize and remodel basement membranes. Organogenesis. 2012;8:49-55. doi: 10.4161/org.20209. Epub 2012 Apr 1.
31. Narita Y, Kagami H, Matsunuma H, Murase Y, Ueda M, Ueda Y. Decellularized ureter for tissue-engineered small-caliber vascular graft. J Artif Organs. 2008;11:91-9. doi: 10.1007/s10047-008-0407-6.
32. Crapo PM, Gilbert TW, Badylak SF. An overview of tissue and whole organ decellularization processes. Biomaterials. 2011;32:3233-43. doi:10.1016/j.biomaterials.2011.01.057.
33. Xu Y, Fu W, Wang Z, Li G, Zhang X. A tissue-specific scaffold for tissue engineering-based ureteral reconstruction. PLoS One. 2015;10:e0120244. doi:10.1371/journal.pone.0120244.
34. de Haan MJ, Witjas FM, Engelse MA, Rabelink TJ. Have we hit a wall with whole kidney decellularization and recellularization: A review. Curr Opin in Biomed Eng. 2021;20:100335. doi:10.1016/j.cobme.2021.100335.
35. Yamada KM, Even-Ram S. Integrin regulation of growth factor receptors. Nat cell Biol. 2002;4:E75-E6. doi:10.1038/ncb0402-e75.
36. Wang P, Xiao S, Fu W, Wang Z, Zhang X, editors. A preliminary study on the promotion of canine adipose-derived stem cell differentiation by perfusion-decellularized ureter matrix. Transplant Proc. 2021;53:2052-59. doi: 10.1016/j.transproceed.2021.06.008.
37. de Jonge P, Simaioforidis V, Geutjes P, Oosterwijk E, Feitz W. Ureteral reconstruction with reinforced collagen scaffolds in a porcine model. J Tissue Eng Regen Med. 2018;12:80-8. doi: 10.1002/term.2366. Epub 2017 Jun 7.
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA

Ethics code: IR.ZAUMS.REC.1401.172


XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Fazeli F, Tavakkoli M, Kheirandish M, Shahraki S. Comparison of Three Decellularization Methods for Preparing Natural Human Ureter Scaffold. J. Ilam Uni. Med. Sci. 2026; 34 (4) :63-73
URL: http://sjimu.medilam.ac.ir/article-1-8877-fa.html

فاضلی فرامرز، توکلی محمود، خیراندیش مهدی، شهرکی سمیرا. مقایسۀ 3 روش سلول‌زدایی تهیۀ داربست‌ طبیعی حالب انسان. مجله دانشگاه علوم پزشکی ایلام. 1405; 34 (4) :63-73

URL: http://sjimu.medilam.ac.ir/article-1-8877-fa.html



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
دوره 34، شماره 4 - ( 7-1405 ) برگشت به فهرست نسخه ها
مجله دانشگاه علوم پزشکی ایلام Journal of Ilam University of Medical Sciences
Persian site map - English site map - Created in 0.17 seconds with 38 queries by YEKTAWEB 4773