:: دوره 28، شماره 6 - ( 11-1399 ) ::
جلد 28 شماره 6 صفحات 32-23 برگشت به فهرست نسخه ها
تأثیر تمرین هوازی بر سطوح کلیوی آپلین و نیتریک ‌‌اکسید بافت کلیۀ رت‌ های نر مواجه شده با نانو اکسید روی
زهرا صالحی آهنگر1 ، معصومه حبیبیان* 2
1- گروه تربیت‌بدنی، واحد ساری، دانشگاه آزاد اسلامی، ساری، ایران
2- گروه تربیت‌بدنی، واحد قائم‌ شهر، دانشگاه آزاد اسلامی، قائم‌شهر، ایران ، habibian_m@yahoo.com
چکیده:   (1877 مشاهده)
مقدمه: نانوذرات به علت کوچک بودن اندازه‌شان، به‌راحتی در اندام‌های بدن تجمع می‌یابند؛ لذا با افزایش استفاده از نانوذرات، نگرانی دربارۀ آثار جانبی آن‌ها نیز بیشتر می‌شود؛ بنابراین، در مطالعۀ حاضر تأثیر تمرین هوازی بر سطوح کلیوی آپلین و نیتریک‌‌ اکسید (NO) بافــت کلیۀ رت‌های مواجه­شده با نانواکسید روی بررسی شد.
مواد و روش‌ها: در این پژوهش تجربی، 35 سر موش صحرایی ویستار نر با دامنۀ وزنی 150 -170 گرم، به‌طور تصادفی به گروه‌های کنترل، سالین، نانواکسید روی، تمرین و تمرین + نانواکسید روی تقسیم شدند. نانواکسید روی (1 میلی‌گرم/کیلوگرم) به‌صورت داخل صفاقی پنج روز در هفته، به گروه‌های نانواکسید روی و تمرین + نانواکسید روی تزریق شد. برنامۀ تمرین ورزشی شامل 4 هفته دویدن فزاینده روی نوار گردان (با سرعت 15 تا 18 متر /دقیقه، 25 تا 44 دقیقه/روز و 5 جلسه/ هفته) بود. دو روز پس از آخرین مداخله‌ها، رت‌‌ها معدوم شدند. بافت کلیه جدا و سطوح آپلین، NO و مالون‌‌دی‌‌آلدئید (MDA) اندازه‌گیری شد و از آنالیز واریانس یک‌راهه برای تجزیه‌وتحلیل داده‌ها استفاده گشت (0.05>P).
یافته‌های پژوهش: تیمار با نانواکسید روی، با افزایش معنا‌داری سطوح NO و MDA و کاهش سطوح کلیوی آپلین در مقایسه با گروه کنترل همراه بود. 4 هفته فعالیت ورزشی، به کاهش MDA در گروه‌های تمرین و تمرین + نانواکسید روی و افزایش آپلین در گروه تمرین منجر شد؛ همچنین ورزش هوازی به افزایش NO کلیوی در موش‌های سالم و کاهش سطوح آن در موش‌های تیمارشده با نانوذرات انجامید.
بحث و نتیجه‌گیری: فعالیت ورزشی می‌تواند نقش محافظتی خود را در برابر آسیب کلیوی ناشی از نانواکسید روی، به‌واسطۀ کاهش استرس اکسایشی، افزایش آپلین و تعدیل سطوح NO در بافت کلیه اعمال کند.
واژه‌های کلیدی: آپلین، تمرین هوازی، نیتریک ‌‌اکسید، نانواکسید روی، مالون‌‌دی‌‌آلدئید
متن کامل [PDF 857 kb]   (824 دریافت)    
نوع مطالعه: پژوهشي | موضوع مقاله: آموزش و ارتقاء سلامت
دریافت: 1398/7/9 | پذیرش: 1399/5/19 | انتشار: 1399/12/10
فهرست منابع
1. Xiao L, Liu C, Chen X, Yang. Zinc oxide nanoparticles induce renal toxicity through reactive oxygen species. Food Chem Toxicol 2016; 90:76-83. doi. 10.1016/j.fct.2016.02.002.
2. Scherzad A, Meyer T, Kleinsasser N, Hackenberg S. Molecular mechanisms of zinc oxide nanoparticle induced genotoxicity short running title genotoxicity of ZnO NPs. Materials 2017; 10: 1427. doi.10.3390/ma10121427.
3. Rim KT, Song SW, Kim HY. Oxidative DNA damage from nanoparticle exposure and its application to worker's health a literature review. Saf Health Work 2013; 4:177-86. doi.10.1016/j.shaw.2013.07.006.
4. Hosseini M, Amani R, Razavimehr V, Moshrefi AH, Aghajanikhah MH. [Histopathologic and biochemical study of zinc oxide nanoparticles effect on renal tissue in Rats]. SJIMU 2018; 26:177-86. (Persian) doi.10.29252/sjimu.26.3.177
5. Khorsandi L, Heidarimoghadam A, Jozi Z. Nephrotoxic effects of low dose zinc oxide nanoparticles in Rats. J Nephropathol 2018; 7:158-65. doi. 10.15171/jnp.2018.35
6. Nishida M, Hamaoka K. The apelin APJ system its role in renal physiology and potential therapeutic applications for renal disease. Nephrology 2013; 1:7. doi. 10.13172/2053-0293-1-1-526
7. Nishida M, Okumura Y, Oka T, Toiyama K, Ozawa S, Itoi T, et al. The role of apelin on the alleviative effect of Angiotensin receptor blocker in unilateral ureteral obstruction-induced renal fibrosis. Nephron Ext2012; 2:39-47. doi. 10.1159/000337091
8. Navar LG, Kobori H, Prieto MC. Intrarenal angiotensin II and hypertension. Curr Hypertens Rep 2003; 5:135-43. doi. 10.1007/s11906-003-0070-5
9. Kadkhodaeielyaderani M, Malekaskar AM, Rostami M, Aberomand M, Khirollah A. [Kinetic activity of isolated nitric oxide synthase enzyme from sheep kidney]. J Mazandaran Uni Med Sci 2013; 22:59-69. (Persian)
10. Farahati S, Atarzadehhosseini SR, Bijeh N, Mahjoob O. [The effect of aerobic exercising on plasma nitric oxide level and vessel endothelium function in postmenopausal women]. RJMS2014; 20:78-88. (Persian)
11. Podhorska M, Dziegiel P, Murawska E, Saczko J, Kulbacka J, Gomulkiewicz A, et al. Effects of adaptive exercise on apoptosis in cells of Rat renal tubuli. Eur J Appl Physiol 2007; 99:217-26. doi.10.1007/s00421-006-0335-1
12. Pujalte I, Passagne I, Daculsi R, Portal C, Ohayon Courtes C, Lazou B. Cytotoxic effects and cellular oxidative mechanisms of metallic nanoparticles on renal tubular cells. Toxicol Im Part Sol Res 2015;4: 409-422. (Persian) doi.10.1039/C4TX00184B
13. Fatahi B, Habibian M. [Effect of aerobic exercise on renal angiotensin ii and angiotensin type 1 receptor levels in administered rats with nano zinc oxide]. MJMS2018; 21:29-34. (Persian)
14. Hosseini M, Amani R, Razavimehr V, Moshrefi AH, Aghajanikhah MH. [Histopathologic and biochemical study of zinc oxide nanoparticles effect on renal tissue in rats]. SJIMU2018; 26:177-186. (Persian) doi.10.29252/sjimu.26.3.177
15. Manke A, Wang L, Rojanasakul Y. Mechanisms of nanoparticle-induced oxidative stress and toxicity. Biomed Res Int 2013; 2013:1-15. doi. 10.1155/2013/942916
16. Lee J, Bae EH, Ma SK, Kim SW. Altered nitric oxide system in cardiovascular and renal diseases. Chonnam Med J 2016; 52:81-90. doi.10.4068/cmj.2016.52.2.81.
17. Poontawee W, Natakankitkul O. Protective effect of cleistocalyx nervosum Var paniala fruit extract against oxidative renal damage caused by cadmium. Molecules2016 22; 21:133. doi.10.3390/molecules21020133
18. Ocak S, Gorur S, Hakverdi S, Celik S, Erdogan S. Protective effects of caffeic acid phenethyl ester, vitamin c, vitamin e and-acetylcysteine on vancomycin-induced nephrotoxicity in Rats. Bas Clin Pharmacol Toxicol2007; 100:328-33. doi. 10.1111/j.1742-7843.2007. 00051.x
19. Fadda LM, Abdelbaky NA, Alrasheed NM, Alrasheed NM, Fatani AJ, Atteya M. Role of quercetin and arginine in ameliorating nano zinc oxide induced nephrotoxicity in Rats. BMC Complement Altern Med 2012; 12: 60. doi. 10.1186/1472-6882-12-60
20. Peeri M, Habibian M, Azarbayjani MA, Hedayati M. Protective effect of aerobic exercise against L-NAME induced kidney damage in Rats. Arh Hig Rada Toksikol 2013; 64:43-9. doi. 10.2478/10004-1254-64-2013-2260.
21. Ito D, Ito O, Cao P, Mori N, Suda C, Muroya Y, et al. Effects of exercise training on nitric oxide synthase in the kidney of spontaneously hypertensive rats. Clin Exp Pharmacol Physiol2013; 40:74-82. doi.10.1111/1440-1681.12040
22. Mahmoody AA, Dabidiroshan V, Gharakhanlou R, Hedayati M. [Effects of exercise and ferula gummosa on apelin of cardiac and kidney tissues in L-NAME induced hypertension in Rats]. Iranian J Health Phys Act 2013; 4:42-50. (Persian)
23. Zhang J, Ren CX, Qi YF, Lou LX, Chen L, Zhang LK, et al. Exercise training promotes expression of Apelin and APJ of cardiovascular tissues in spontaneously hypertensive rats. Life Sci 2006 15; 79:1153-9. doi.10.1016/j.lfs.2006.03.040
24. Chen H, Wan D, Wang L, Peng A, Xiao H, Petersen RB, et al. Apelin protects against acute renal injury by inhibiting TGF-β1. Biochim Biophys Acta2015; 1852:1278-87. doi.10.1016/j.bbadis.2015.02.013.
25. Lv D, Li H, Chen L. Apelin and APJ a novel critical factor and therapeutic target for atherosclerosis. Acta Biochim Biophys Sin Shanghai 2013;45: 527-33. doi. 10.1093/abbs/gmt040

Ethics code: 20821404942014/6-1395



XML   English Abstract   Print



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
دوره 28، شماره 6 - ( 11-1399 ) برگشت به فهرست نسخه ها